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May 11, 2023

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Informes científicos volumen 13,

Scientific Reports volumen 13, Número de artículo: 7665 (2023) Citar este artículo

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Este estudio se realizó para cumplir con dos objetivos. El primer objetivo fue aislar el extracto de semilla de Gundelia tournefortii L. en dos etapas fenológicas de producción de semilla (el comienzo y el final de la producción de semilla); el segundo fue identificar los compuestos de ácidos grasos de las semillas de G. tournefortii L. en sus principales hábitats ubicados en la región central de Zagros, Irán. Entre ellos, se estudiaron algunos de los principales factores ambientales en la etapa de crecimiento reproductivo, es decir, la fisiografía, el suelo y el clima. La extracción se realizó utilizando el aparato Soxhlet, y los compuestos de ácidos grasos se identificaron mediante el análisis GC-FID. Como resultado, el sitio No. 5 con los valores de 6.06 y 7.21 g tuvo la mayor cantidad de extracto producido, mientras que los sitios No. 7 y 8 tuvieron la menor con 2.86 y 3.84 g en dos estados fenológicos de producción de semilla. Hubo una fuerte correlación entre las principales variables ambientales y la cantidad de extracto producido en las etapas fenológicas de producción de semillas; esto también se confirmó en relación con los compuestos de ácidos grasos y algunas de sus características. En general, la eficacia de los factores ambientales en el proceso de síntesis de metabolitos secundarios es innegable.

A finales del siglo XIX, debido a los crecientes avances en diferentes ciencias, especialmente la química, aunado a su extenso campo y la farmacéutica, se introdujo la primera extracción de materiales químicos puros para uso medicinal que condujo al tratamiento de pacientes, milagrosamente1. A raíz de ello, la tendencia al consumo de plantas medicinales aumentó considerablemente en las últimas décadas, por lo que el siglo XXI podría denominarse la era del estudio y consumo de plantas medicinales2.

Los metabolitos secundarios de las plantas medicinales se procesan sujetos al control original de los procesos genéticos, mientras que la producción de los compuestos mencionados se ve afectada por factores ambientales. Se cree que los metabolitos secundarios se producen para regular las adaptaciones de la planta frente a factores desfavorables y estrés ambiental, y se extraen para la defensa química para mantener el equilibrio y continuar las actividades vitales de la planta3.

Las grasas y de todo tipo de origen vegetal y animal son los componentes más importantes de las fuentes de nutrientes4. Los ácidos grasos consisten en: (1) enlaces simples saturados, (2) insaturados y (3) enlaces múltiples insaturados. Los ácidos grasos se clasifican según la longitud de la cadena, el recuento de dobles enlaces o su grado de insaturación en la cadena5. Entre estos, las composiciones de ácidos grasos omega-3, omega-6 y omega-9 pertenecen a las dos clases principales de los compuestos mencionados, a saber, ácidos grasos poliinsaturados (PUFA) y ácidos grasos monoinsaturados (MUFA)6. El cuerpo humano necesita estos ácidos grasos esenciales (AGE) para sus procesos biológicos. Los ácidos grasos omega-3 son beneficiosos para las actividades del corazón, el cerebro y el metabolismo. Los ácidos grasos omega-6 son una importante fuente de energía para el cuerpo humano y los ácidos grasos omega-9 deben existir en menor medida porque son producidos por el cuerpo humano para promover la salud metabólica7.

La mayoría de los bioquímicos y ecólogos han ampliado sus investigaciones en el campo de la identificación y análisis de diferentes factores ecológicos en asociación con la cantidad y calidad de metabolitos secundarios y compuestos bioactivos naturales8. Los factores ecológicos podrían afectar las enzimas propietarias relacionadas con la vía de síntesis bioquímica de los metabolitos secundarios y reducir la estabilidad de la contribución9. En este contexto, los factores ecológicos más importantes sobre la cantidad y calidad de los metabolitos secundarios y compuestos bioactivos naturales se clasifican en climáticos, edáficos y fisiográficos. Cada uno de estos factores está formado por diferentes componentes, creando diferentes gradientes ambientales en el estudio ecológico de los sitios en cuestión10. Los factores genéticos y hereditarios como la diversidad de especies entre plantas e intraplantas, la variedad entre cultivares, diferentes genotipos y la adopción de métodos y técnicas de mejoramiento de cultivos y mejora de razas contribuyen en gran medida a la tasa de producción de metabolitos secundarios11. La integración de los factores genéticos y ambientales en los estudios ecológicos puede brindar resultados favorables para lograr un análisis integral de la cantidad y calidad de los metabolitos secundarios y compuestos bioactivos naturales12.

Irán debido a que está ubicado en una región geográfica especial está sujeto a la aparición de diferentes climas y condiciones edáficas con un lugar único en la geografía vegetal en términos de diversidad de plantas a nivel mundial. Irán es una de las 10 plantas específicas de origen más importantes. Además, existe un campo de cultivo de diversas plantas con diferentes características ecológicas como plantas comestibles, medicinales e industriales en Irán con una historia registrada de miles de años13.

Las Asteraceae son la familia más grande de plantas con flores con alrededor de 900 géneros y más de 13,000 especies. El género Gundelia, de Asteraceae, tiene solo una especie en Irán, llamada Gundelia tournefortii L14. El género Gundelia es una planta perenne, vigorosa y suculenta con hojas alternas y divisiones pinnadas por lados aserrados que se convierten en espinas. Las hojas superiores rodean y cubren los tallos de los capitolios, que tienen flores tubulares de las monoicas, dispuestas una al lado de la otra en forma de colección esférica. Cada capitolio tiene una bráctea principal con un collar que consta de muchas filas de folíolos conectados, que crean un cuenco cónico invertido con bordes espinosos. El receptáculo está cubierto por una paja en forma de escama conectada que forma células, cavidades y cámaras por las brácteas del cuello, donde se coloca una flor en el interior. Las flores vienen en verde, amarillo, blanco, rosa y morado. Los capitolios eventualmente se vuelven leñosos e indehiscentes14. Esta planta crece en la región montañosa, tropical o templada. La distribución más alta de esta planta a escala mundial se reporta en los países alrededor del Mar Mediterráneo, países africanos, Medio Oriente, Afganistán, Turkmenistán y más allá del Cáucaso14. Se enfatiza que no hay evidencia de consumir los metabolitos secundarios de G. tournefortii L. para hacer un medicamento herbario formulado registrado en la Farmacopea iraní. También se destaca que el Ministerio de Salud, Medicina y Educación Médica de Irán no ha emitido ninguna licencia con respecto a los productos medicinales o la droga a base de hierbas sintetizada obtenida de los metabolitos secundarios de G. tournefortii L. para uso general.

El objetivo de este estudio es identificar los perfiles de ácidos grasos de las semillas de G. tournefortii L. y sus características a través del aparato soxhlet y evaluarlos por GC/FID. La evaluación y los análisis permitirían la comprensión de algunas de las variables ecológicas más importantes (clima, suelo y fisiografía) sobre el volumen de extracto producido a través de PCA y análisis de conglomerados entre los principales hábitats de G. tournefortti L. ubicados en 11 principales hábitats de la región central de Zagros en Irán. Los compuestos de ácidos grasos identificados de las semillas de G. tournefortii L. y sus características se evaluaron y analizaron mediante las técnicas antes mencionadas.

En general, la extracción de aceite de semilla de G. tournefortii L. se lleva a cabo en dos etapas fonológicas diferentes de crecimiento reproductivo, a saber, el comienzo de la producción de semillas y el final de la producción de semillas para los hábitats en cuestión. Los colores del extracto oleoso en cada hábitat varían en el espectro amarillo. Los resultados indican que los rendimientos en volumen de extracto en estos dos estados fenológicos mencionados son diferentes en su sentido cuantitativo, lo que no se cumple para el estado cualitativo. En cuanto al volumen cuantitativo del extracto obtenido al inicio de las etapas de producción de semilla se evidencia (5.72 g) en el sitio No. 4 y (6.06 g) en el sitio No. 5 con un promedio de (7.21 g); mientras que en cuanto al volumen cuantitativo del extracto obtenido al final de las etapas de producción de semilla en los sitios No. 4 y No. 5 los promedios son (6.88 g) y (7.21 g), respectivamente. Podría afirmarse que los sitios mencionados son superiores en términos de volumen de extracción. En cuanto al volumen cuantitativo más bajo, los sitios se encuentran tanto al principio como al final de las etapas de producción de semillas. El volumen cuantitativo más bajo lo registran los sitios No. 7 con un promedio de (2.86 g) y el No. 11 (2.92 g) al inicio de la etapa de producción de semilla. Por su parte, la menor cantidad cuantitativa del extracto producido por semillas de G. tournefortii L. se reportó en los sitios No. 6, con un promedio (de 3.84) y No. 11 (3.86) al final de la etapa de producción de semillas. Entre los sitios de estudio, los sitios No. 7 y No. 11 al inicio de la etapa de producción de semilla y los sitios No. 6 y No. 11 al final de la etapa de producción de semilla tuvieron la menor cantidad de extracto producido de G. tournefortii L semillas (Cuadro 1).

Los resultados obtenidos al comparar las medias entre los sitios de estudio no revelaron diferencia significativa en los sitios No. 7, 11, 1 y 10 en cuanto al rendimiento del extracto al inicio de la etapa de producción de semilla; mientras que en los sitios restantes Nos.: que los otros siete sitios, a saber, 2, 3, 4, 5, 6, 8 y 9, tenían una diferencia significativa entre sí. Los sitios de estudio, 6 y 11, 2, 7 y 8, y 1, 3 y 9 no son significativamente diferentes en cuanto al volumen de extracto al final de la etapa de producción de semillas. Los resultados indican que los sitios 4, 5 y 10 tuvieron una diferencia significativa. En general, la comparación de la tendencia de las variaciones en términos del volumen de extracto de rendimiento en estos procesos revela que el porcentaje encontrado al final de la etapa de producción de semillas es más alto que en la etapa inicial. La tendencia creciente mencionada es que estos porcentajes se alteran entre (7.33%) en el sitio No. 10 a (27.71%) en el No. 9. Se observa que solo en el sitio No. 6, el contenido extraído al final de la etapa de producción de semilla en (5,99%) fue menor que todos los demás sitios (Cuadro 2).

En este estudio, se identifican los siguientes seis compuestos de ácidos grasos: ácido mirístico (C14:0; ácido tetradecanoico), ácido palmítico (C16:0; ácido hexadecanoico), ácido esteárico (C18:0; ácido octadecanoico), ácido oleico (C18 :1; ácido 9-octadecenoico), ácido linoleico (C18:2; ácido 9,12–octadecadienoico) y ácido linolénico (C18:3; ácido 9,12,15–octadecatrienoico). Estos compuestos de ácidos grasos identificados se comparan con las muestras de referencia disponibles. Todos los experimentos se realizaron para ambas etapas fenológicas de producción de semillas de G. tournefortii L. en los sitios de estudio, por separado (Figura complementaria 1 y Figura complementaria 2).

En general, los ácidos grasos identificados no son significativamente diferentes en su sentido cualitativo en ambas etapas fenológicas, mientras que en el sentido cuantitativo, se identifican en ambas etapas fenológicas. Estos compuestos son diferentes entre sí, en sus características y sentido cuantitativo. Entre estos compuestos, los dos ácidos linoleico como los compuestos de ácidos grasos más altos y el ácido merístico como el más bajo, se identifican y registran en ambas etapas fenológicas.

El mayor volumen de estos ácidos grasos se atribuye al ácido oleico, ácido palmítico y ácidos esteáricos. Estos compuestos tienen la misma superioridad general en ambas etapas fenológicas de producción de semillas de G. tournefortii L. Los dos compuestos restantes en el contenido de ácidos grasos, ácido linoleico y ácido mirístico, se registran como los que tienen el contenido más bajo en ambas etapas fenológicas. El volumen cuantitativo obtenido de estos dos es diferente entre sí en ambas etapas fenológicas. Las diferencias en los valores cuantitativos de los perfiles de ácidos grasos identificados generalmente se atribuyen a dos factores principales, las características genéticas de la planta y el factor principal de las propiedades ecológicas en los sitios de estudio.

Los metabolitos secundarios, constituyentes y subproductos de las plantas medicinales se producen originalmente sujetos al control de procesos genéticos influenciados por factores ambientales. Porque su contribución a las plantas no está clara; se cree que los metabolitos secundarios se producen principalmente para regular la adaptación de la planta a factores adversos y tensiones ambientales18. Los factores ambientales provocan cambios en el procedimiento de síntesis y producción de diversos constituyentes de las plantas medicinales, tanto cuantitativa como cualitativamente18. El cultivo de plantas medicinales se considera rentable cuando la producción de metabolitos primarios y secundarios reportados en la planta es óptima17.

Algunas de las características más esenciales de estos ácidos grasos son: ácidos grasos saturados (SFA), ácidos grasos insaturados (UFA), ácidos grasos insaturados monoenlazados (MUFA) y grupos de ácidos grasos insaturados polienlazados (PUFA), el ácido linoleico proporción de ácido a ácido linolénico (n-6/n-3), proporción de ácidos grasos insaturados a ácidos grasos saturados (UFA/SFA), proporción de ácidos grasos poliinsaturados a ácidos grasos saturados (PUFA/SFA), proporción de ácidos grasos monoinsaturados a Se estudian y analizan en todos los sitios la relación de ácidos grasos poliinsaturados (MUFAs/PUFAs) y el índice de valor de Cox "Ec. (1)" en las dos etapas fenológicas de producción de semillas de G. tournefortii L. El índice del valor de cox se calcula en porcentaje de ácidos grasos insaturados de 18 carbonos19.

En la ecuación anterior, C18:1, C18:2 y C18:3 son ácidos grasos oleico, linoleico y linolénico, respectivamente.

Los resultados de la comparación de medias entre los sitios de estudio, junto con sus detalles relevantes, se tabulan en la Tabla 3 (el inicio de la etapa de producción de semillas) y la Tabla 4 (el final de la etapa de producción de semillas). En cuanto a los hallazgos con respecto a la etapa inicial, los siguientes tipos de ácidos grasos identificados se tabulan en la Tabla 3: el ácido mirístico, el ácido palmítico y el ácido esteárico se identificaron como los tres ácidos grasos saturados. Los volúmenes más altos y más bajos de ácido mirístico se reportan en los sitios de estudio No. 9 (0.57%) y No. 1 (0.001%). El mayor contenido de ácido palmítico se reporta en los sitios No. 9 (14.48%), No. 11 (11.90%) y No. 4 (10.80%), respectivamente. El menor contenido de los compuestos mencionados se registra en el sitio No. 1 con (9.76%). El mayor volumen de ácido esteárico se observa en el sitio No. 11 con (3.69%), y el más bajo se reporta en el sitio No. 9 con (1.88%). Los mayores volúmenes de SFA se reportan en el sitio No. 9 con (16.94%), el sitio No. 11 con (15.63%) y el sitio No. 4 con (13.96%). El contenido más bajo de SFAs se atribuye al sitio No. 1 con (12.66%). El mayor volumen de MUFA se registra en los sitios N° 11 con (40,2%), N° 4 con (38,28%) y N° 3 con (38,09%). El menor volumen se observa en el sitio No. 9 con (31.7%). En cuanto a los AGPI, el mayor volumen se atribuye al ácido linoleico y el menor al ácido linolénico, los sitios N° 6 en (51,51%), N° 1 en (51,16%) y N° 5 en (51,07%) contienen los mayores volúmenes de ácido linoleico. El volumen más bajo se registra para el sitio No. 4 con (47.6%). El mayor volumen de ácido linolénico se obtiene del sitio No. 9 al (2.53%). El menor volumen se obtiene de los sitios No. 5 y 8 ambos al (0.09%). Se revela que, el mayor volumen de PUFA se atribuye al sitio No. 1 con (52,28%), el sitio No. 6 con (51,60%) y el sitio No. 9 con (51,32%). El menor volumen se atribuye al sitio No. 11 con (44,25%). Los resultados de los UFA revelan que el mayor volumen de los compuestos mencionados se atribuye a los sitios No. 1 con (87,32%), No. 6 con (87,29%). , N° 10 al (87,04%) y N° 5 al (87,02%). Es mientras que la cantidad más baja de los compuestos mencionados se reportó en el sitio No. 9 (83.05%). La relación ácido linoleico a ácido linolénico (n-6/n-3) en todos los sitios es significativamente diferente entre sí como los volúmenes más altos se atribuyen al sitio No. 8 en (722.87) y los más bajos al sitio No. 9 en (19.45). La relación de UFA a SFA revela que los volúmenes más altos se atribuyen al sitio No. 1 en (6.89) y al sitio No. 6 en (6.88). El volumen más bajo se atribuye al sitio No. 9 en (4.9). La proporción de PUFA a SFA indica que el sitio No. 1 en (4.12) y el sitio No. 6 en (4.07) son los más altos. La relación más baja se atribuye al sitio No. 11 en (2.83). La relación MUFAs a PUFAs indica que el volumen más alto es del sitio No. 11 en (0.9) y el más bajo es del sitio No. 9 en (0.61). Los resultados del índice de valor de Cox indican que el sitio No. 9 en (5.85) tiene el volumen más alto entre todos los sitios. El volumen más bajo del índice mencionado se atribuye al sitio No. 11 en (5.01). El índice de valor de Cox de los otros sitios fluctúa entre los volúmenes más bajos y más altos al comienzo de la etapa de producción de semillas.

En cuanto a los hallazgos con respecto a la etapa inicial, los siguientes tipos de ácidos grasos identificados se tabulan en la Tabla 4: el ácido mirístico, el ácido palmítico y el ácido esteárico se identificaron como los tres ácidos grasos saturados. Los volúmenes más altos y más bajos de ácido mirístico se reportan en los sitios de estudio No. 2 en (0.10%) y No. 1 en (0.002%). El mayor contenido de ácido palmítico se reporta en los sitios No. 8 con (13.50%) y No. 9 (con 12.61%). El menor contenido de los compuestos mencionados se registra en el sitio No. 7 con (9.37%). El mayor volumen de ácido esteárico se observa en los sitios No. 8 en (3.79%), No. 4 en (3.75%) y No. 9 en (3.61%). El más bajo se reporta en el sitio No. 1 con (2.58%). Los mayores volúmenes de SFA se reportan en el sitio No. 8 con (17.45%), el sitio No. 9 con (16.23%) y el sitio No. 4 con (15.80%). El contenido más bajo de SFAs se atribuye al sitio No. 7 con (12.15%). El mayor volumen de MUFA se registra en los sitios N° 9 con (41,19%), N° 8 con (40,90%) y N° 6 con (39,32%). El menor volumen se observa en el sitio No. 4 con (30.75%). En cuanto a los PUFA, el mayor volumen se atribuye al ácido linoleico y el menor al ácido linolénico. Los sitios No. 4 en (53.22%), No. 7 en (51.63%) y No. 5 en (51.23%) contienen los mayores volúmenes de ácido linoleico. El volumen más bajo lo registra el sitio No. 8 con (41.33%). El mayor volumen de ácido linolénico se obtiene de los sitios No. 9 en (0.48%) y No. 3 en (0.39%). El menor volumen se obtiene de los sitios No. 10 al (0.05%) y No. 11 al (0.06%). Se revela que el mayor volumen de PUFA se atribuye al sitio No. 4 con (53,47%). El menor volumen se atribuye al sitio No. 8 con (41.61%). Los resultados de los UFAs revelan que el mayor volumen de los compuestos mencionados se atribuye al sitio No. 7 con (87.83%) y la menor cantidad de los compuestos mencionados se reporta al sitio No. 8 con (82.53%). La proporción de ácido linoleico a ácido linolénico (n-6/n-3) en todos los sitios es significativamente diferente entre sí, ya que los volúmenes más altos se atribuyen al sitio No. 11 en (720) y los más bajos al sitio No. 9 en (720). 93.51). La relación UFA a SFA revela que los volúmenes más altos se atribuyen al sitio No.7 en (7.22). El volumen más bajo se atribuye al sitio No. 9 en (5.15). La relación PUFA a SFA indica que el sitio No. 7 en (4.25) y el más bajo se atribuye al sitio No. 8 en (2.38). La relación MUFA a PUFA indica que el volumen más alto es de los sitios No. 8 y 9 en (0.98) y el más bajo es del sitio No. 4 en (0.57). Los resultados del índice de valor de Cox indican que los sitios No. 4 en (5.86) y No. 7 en (5.83) tienen el volumen más alto entre todos los sitios. El volumen más bajo del índice mencionado se atribuye al sitio No. 8 en (4.73). El índice de valor de Cox de los otros sitios fluctúa entre los volúmenes más bajos y más altos al comienzo de la etapa de producción de semillas. En general, los resultados obtenidos de las Tablas 3 y 4 mostraron que los volúmenes de ácidos grasos insaturados de las semillas de G. tournefortii L. son mucho mayores que sus ácidos grasos saturados. (Figs. 1 y 2).

Gráfico de barras de las cantidades cuantitativas de SFA, MUFA, PUFA y UFA al inicio de la etapa de producción de semilla de G. tournefortii L. en los sitios de estudio.

Gráfico de barras de las cantidades cuantitativas de SFA, MUFA, PUFA y UFA al final de la etapa de producción de semilla de G. tournefortii L. en los sitios de estudio.

Este análisis se lleva a cabo para valorar y evaluar el volumen de rendimiento del extracto y el volumen cuantitativo de los ácidos grasos identificados y sus características en los principales hábitats de G. tournefortii L. en ambas etapas fenológicas de la producción de semillas (es decir, el comienzo de la producción de semillas y el final) 20. La aplicación de estas técnicas permite identificar los compuestos de ácidos grasos de la mencionada planta y sus características en los sitios de estudio. El análisis de conglomerados se ejecuta para evaluar la similitud entre los sitios de estudio y su clasificación. Estos dos procedimientos se adoptan para determinar el volumen de compuestos extraídos de semillas de G. tournefortii L.; sobre los factores ambientales más importantes en ambas etapas fenológicas. El volumen cuantitativo de los ácidos grasos identificados de las semillas de G. tournefortii L. y sus características se clasifican en ambas etapas fenológicas de producción de semillas. En este estudio, se ejecuta el proceso de agrupamiento jerárquico aglomerativo basado en el índice de similitud de Gower a través del método de enlace único introducido por 21 y 2221,22. La matriz de correlación y sus valores entre algunas variables ecológicas importantes y el volumen de extracto de semillas de G. tournefortii L. producido se analizan durante las dos etapas fenológicas de la producción de semillas (Figura complementaria 3 y Figura complementaria 4). Las matrices y sus valores y características también se evalúan con los ácidos grasos identificados en los sitios de estudio (Fig. 5 complementaria y Fig. 6 complementaria).

PCA y análisis de conglomerados del volumen producido de extracto junto con los principales factores ambientales al comienzo de la etapa de producción de semillas.

En este paso, se evalúa el volumen de extracto producido por las semillas de G. tournefortii L. junto con algunos de los principales factores ecológicos ambientales junto con la fisiografía, el clima y el suelo al comienzo de la etapa de producción de semillas mediante la aplicación del método PCA y la agrupación. análisis. Los nombres de algunos de los factores ambientales más importantes y su contenido cuantitativo calculado en las etapas de crecimiento reproductivo de G. tournefortii L. en los sitios de estudio se tabulan en la Tabla 9. Como se observa en la (Fig. 3) el PC1 se representa en la horizontal El eje representa la proporción más alta de la varianza en (51,1 %), mientras que el PC2 representado en el eje vertical representa (22,8 %). Los resultados indican que el volumen de extracto de semillas de G. tournefortii L. se correlaciona directa y positivamente con el pH del suelo y la temperatura media anual. Los otros factores ambientales están correlacionados con el volumen del extracto producido y están correlacionados entre sí. Los resultados de la varianza de valores propios, el porcentaje de varianza y el porcentaje de varianza acumulada se tabulan en la Tabla 5.

Análisis de componentes principales (PCA) de la cantidad de extracto producido a partir de semillas de G. tournefortii L. junto con algunos factores ambientales al comienzo de la etapa de producción de semillas (cuatro gráficos arriba) y análisis de conglomerados basado en un proceso de conglomerado aglomerativo jerárquico utilizando el método de enlace único en el inicio de la etapa de producción de semillas en los sitios de estudio (dos por debajo de los dendrogramas).

Los resultados del análisis de conglomerados indican que los sitios de estudio están agrupados en cuatro grupos principales, como sigue: los sitios No. 1, 4 y 5 constituyen el primer grupo; los sitios No. 2, 3, 6, 10 y 7 constituyen el segundo grupo; los sitios N° 9 y constituyen el tercer grupo. El sitio No. 8 constituye el cuarto grupo. El coeficiente de aglomeración es 0,34 (Fig. 3) PCA y análisis de conglomerados del volumen producido del extracto junto con los principales factores ambientales al final de la etapa de producción de semillas.

Los volúmenes de extracto de semillas de G. tournefortii L. y algunos de los factores ambientales al final de la etapa de producción de semillas se evalúan aplicando el método PCA y el análisis de conglomerados en este estudio. Como se observa en la (Fig. 4), el PC1 graficado en el eje horizontal representa la mayor proporción de la varianza con (51.1%), mientras que el PC2 graficado en el eje vertical representa (24.1%). Los resultados indican una ligera diferencia entre la temperatura anual y los factores de pH del suelo. Una ligera diferencia se correlaciona positiva y directamente con el volumen de rendimiento sujeto a la posición geométrica de los otros factores ambientales con respecto a las dos dimensiones de PCA. Los otros factores ambientales no se correlacionan directamente con el volumen de extracto de semillas de G. tournefortii L., aunque se correlacionan entre sí. Los resultados de la varianza del valor propio, el porcentaje de varianza y el porcentaje de varianza acumulada se muestran en la Tabla 6.

Análisis de componentes principales (PCA) de la cantidad de extracto producido a partir de semillas de G. tournefortii L. junto con algunos factores ambientales al final de la etapa de producción de semillas (cuatro gráficos arriba) y análisis de conglomerados basado en un proceso de conglomerado aglomerativo jerárquico utilizando el método de enlace único en el final de la etapa de producción de semillas en los sitios de estudio (dos por debajo de los dendrogramas).

Los resultados del análisis de conglomerados indican que los sitios de estudio están agrupados en cuatro grupos principales, como sigue: los sitios No. 1, 2, 6, 10, 7, 4 y 5 constituyen el primer grupo; el sitio No. 3 constituye el segundo grupo; los sitios No. 9 y 11 constituyen el tercer grupo. El sitio No. 8 constituye el cuarto grupo. El coeficiente de aglomeración es (0,38), (Fig. 4).

PCA y análisis de conglomerados de los compuestos de ácidos grasos identificados de las semillas de G. tournefortii L. y sus características al comienzo de la etapa de producción de semillas.

Los compuestos de ácidos grasos identificados de la semilla de G. tournefortii L. y sus características relevantes al comienzo de la producción de semillas se evalúan aplicando el método PCA y el análisis de conglomerados. El PC1 graficado en el eje horizontal representa la mayor proporción de la varianza en (53%), mientras que el PC2 graficado en el eje vertical está en (41.9%) de la variación total. Los seis compuestos de ácidos grasos identificados están correlacionados y se muestran en dos dimensiones PCA. El ácido mirístico se correlaciona positivamente con los ácidos grasos palmítico y linolénico, con una correlación negativa con los ácidos grasos oleico y esteárico. No existe una correlación significativa entre el ácido mirístico y el ácido linoleico. El ácido palmítico se correlaciona positivamente con el ácido linolénico; mientras que no existe una fuerte correlación entre el ácido palmítico y los otros tres ácidos grasos. Se observa una correlación significativa y fuerte entre el ácido esteárico y el ácido oleico, sin embargo, se observa una correlación moderada entre los ácidos esteárico, linoleico y linolénico. Se observa una correlación relativamente fuerte entre los ácidos grasos oleico y linolénico, sin embargo, como se mencionó anteriormente, los ácidos grasos identificados, como uno solo o en combinación, tienen diferentes grados de correlación. Las características de los ácidos grasos identificados según PCA revelan que la menor contribución de las variables estudiadas se atribuye a la relación ácido linoleico a ácido linolénico. Las demás variables indican una mayor contribución en las dimensiones del PCA. Por lo tanto, la mayor correlación entre los ácidos grasos saturados se atribuye al ácido palmítico. La correlación más alta entre los MUFA se asigna al ácido oleico. La mayor correlación entre los PUFA se atribuye al ácido linoleico. La correlación entre SFAs y UFAs se observa en su sentido negativo e inverso. La relación UFAs a SFAs indica una correlación negativa e inversa con los SFAs, mientras que lo mismo es una correlación positiva y directa en los UFAs. Esta relación se correlaciona negativa e inversamente con el ácido palmítico. La proporción de PUFA a SFA indica que existe una correlación negativa y directa con los SFA. Por el contrario, la proporción de UFA a SFA está positiva y directamente correlacionada. El resultado de la relación MUFAs a PUFAs indica una correlación positiva y directa con la cantidad de MUFAs y una correlación negativa e inversa con el volumen de PUFAs. Además, se observa una correlación positiva y directa entre esta proporción y los compuestos de ácidos grasos, los ácidos grasos oleico y esteárico. La varianza del valor propio, el porcentaje de varianza y el porcentaje de varianza acumulada se muestran en la Tabla 7.

Los resultados del análisis de conglomerados indican que los sitios de estudio están agrupados en cuatro grupos principales, como sigue: los sitios No. 1, 5, 7, 8 y 6 constituyen el primer grupo; los sitios No. 2, 3, 4 y 10 constituyen el segundo grupo. El sitio No. 11 constituye el tercer grupo. El sitio No. 9 constituye el cuarto grupo. El coeficiente de aglomeración es 0,75 (Fig. 5).

Análisis de componentes principales (PCA) de los perfiles de ácidos grasos de las semillas de G. tournefortii L. y sus características al comienzo de la etapa de producción de semillas (cuatro gráficos arriba) y análisis de conglomerados basado en un proceso de conglomerado aglomerativo jerárquico utilizando el método de enlace único al comienzo de etapa de producción de semillas en los sitios de estudio (dos por debajo de los dendrogramas).

PCA y análisis de conglomerados de los compuestos de ácidos grasos de las semillas de G. tournefortii L. y sus características al final de la etapa de producción de semillas.

Los compuestos de ácidos grasos de las semillas de G. tournefortii L. y sus características relevantes al final de la etapa de producción de semillas se analizan mediante el método PCA y el análisis de conglomerados. El PC1 graficado en el eje horizontal representa la proporción más alta de la varianza con un (67 %), mientras que el PC2 graficado en el eje vertical es (18,3 %) de la variación total. Se evalúa la correlación entre los compuestos de ácidos grasos y luego se determina la correlación entre sus propiedades relacionadas entre sí y con los compuestos de ácidos grasos, obteniéndose los siguientes resultados: el ácido mirístico se correlaciona negativa y moderadamente con el ácido esteárico; la correlación entre el ácido palmítico y los otros tres compuestos de ácidos grasos esteárico, linoleico y linolénico, se reportan positiva y muy fuerte, negativa y fuerte y positiva y moderada, respectivamente. En este proceso, se observa una correlación significativa y fuerte entre los ácidos esteárico y palmítico. El ácido esteárico se correlaciona negativa y moderadamente con el ácido linoleico. El ácido oleico se correlaciona negativa e inversamente con el ácido linoleico. Existe una correlación positiva y directa entre los ácidos grasos linoleico, palmítico y linolénico, mientras que el ácido linoleico se correlaciona negativamente con el ácido oleico y esteárico. El ácido linoleico se correlaciona negativamente con el ácido palmítico, con una correlación negativa con el ácido oleico y una correlación moderada con el ácido linolénico. El ácido linolénico se correlaciona positiva y moderadamente con el ácido palmítico y negativa e inversamente con el ácido linoleico. Los ácidos grasos de los compuestos mirístico y linolénico tienen una menor contribución en las dimensiones del PCA en comparación con otros compuestos. Los resultados obtenidos a partir de las características de los ácidos grasos identificados mediante la aplicación del método PCA son: la menor contribución de las características pertenece al ácido linoleico a la relación de ácido linolénico en las dimensiones del PCA y la mayor correlación entre los SFA se atribuye al palmítico y al esteárico. ácidos. La mayor correlación entre los ácidos grasos monoinsaturados MUFA se atribuye al ácido oleico. La mayor correlación entre los PUFA se atribuye al ácido linoleico. La correlación entre SFA y UFA es negativa e inversa. En este contexto, los ácidos grasos palmítico y esteárico se correlacionan negativa e inversamente con la proporción de UFA a SFA. Existe una relación negativa e inversa entre SFAs y UFAs ratio. Esta relación se correlaciona negativa e inversamente con los SFA y se correlaciona positiva e inversamente con las otras dos características de los mismos ácidos grasos. Esta proporción se correlaciona negativa e inversamente con los ácidos grasos palmítico y esteárico. Esta relación se correlaciona positiva y directamente con el ácido linoleico. La proporción de MUFA a PUFA indica una correlación positiva y directa con el volumen de MUFA y está negativa e inversamente correlacionada con los PUFA. Esta relación está positiva y directamente correlacionada con el ácido oleico y negativa e inversamente correlacionada con el ácido linoleico. La varianza del valor propio, el porcentaje de varianza porcentual y el porcentaje de varianza acumulada se tabulan en la Tabla 8.

Los resultados del análisis de conglomerados indican que los sitios de estudio están agrupados en cuatro grupos principales, como sigue: los sitios No. 1, 3, 7, 10 y 11 constituyen el primer grupo; los sitios No. 2, 5 y 6 constituyen el segundo grupo; los sitios No. 8 y 9 constituyen el tercer grupo. El sitio No. 4 constituye el cuarto grupo. El coeficiente de aglomeración es 0,62 (Fig. 6).

Análisis de componentes principales (PCA) de los perfiles de ácidos grasos de las semillas de G. tournefortii L. y sus características al final de la etapa de producción de semillas (cuatro gráficos arriba) y análisis de conglomerados basado en un proceso de conglomerado aglomerativo jerárquico utilizando el método de enlace único al final de etapa de producción de semillas en los sitios de estudio (dos por debajo de los dendrogramas).

Las semillas de plantas, cultivadas en la naturaleza, son una fuente importante de aceite para uso nutricional, medicinal e industrial en áreas naturales. Como las diferentes fuentes de aceite tienen diferentes composiciones, es necesario e inevitable tratar de introducir nuevas fuentes de aceite para la nutrición para generar energía y asegurar la salud. Se consumen todos los órganos de la planta de G. tournefortii L. (raíces, tallos, hojas, flores y semillas)23. Los géneros de Gundelia L. se originan en las regiones del Medio Oriente y el Mediterráneo, entre los cuales G. tournefortii L. es bien conocido y se especifica como una valiosa fuente de alimento24. Los elementos constitutivos de esta planta se aplican para el tratamiento de diferentes enfermedades como diarreas y bronquitis, enfermedades de la piel, dolores, diarreas, enfermedades respiratorias, trastornos digestivos, laxantes, sedantes, derrames cerebrales, dolencias gástricas, hipoglucemiantes, vitíligo, hipertensión arterial y cáncer25 ,26,27,28,29,30,31,32,33.

El extracto de aceite de semilla de G. tournefortii L. se reporta al final de la etapa de producción de semilla en todos los sitios de estudio. El sitio No. 6 es una excepción ya que su extracto de rendimiento al comienzo de la etapa de producción de semillas es mayor que el de la etapa. Los perfiles de ácidos grasos de G. tournefortii L. no se alteran cualitativamente en ambas etapas fenológicas de producción de semillas, mientras que cuantitativamente se registran diferentes volúmenes en los sitios de estudio. En ambas etapas fenológicas de producción de semillas, se identifican seis compuestos de ácidos grasos, cada uno con un rango diferente de volumen en todos los sitios de estudio. Se consideran y evalúan nueve características específicas e idénticas para ambas etapas fenológicas de la producción de semillas. Entre estas características, el mayor volumen de las variaciones reportadas en ambas etapas fenológicas de la producción de semillas pertenece a la relación ácido linoleico a ácido linolénico, mientras que el menor volumen se atribuye al índice de valor de Cox entre los sitios de estudio. En general, el volumen de ácidos grasos insaturados se registra mayor que el de los SFA en ambas etapas fenológicas de producción de semillas. Además, el volumen de SFA al final de la etapa de producción de semillas es mayor que en la etapa inicial. El volumen de PUFA es mayor que el de MUFA en ambas etapas de producción de semillas. El consumo diario de PUFA n-3 en la dieta es importante ya que tienen muchos efectos beneficiosos sobre las funciones fisiológicas del cuerpo humano, como la presión arterial, la frecuencia cardíaca, los triglicéridos, la inflamación, la función endotelial y la diastólica cardíaca34. En general, los tipos de pescado azul son, como el atún, el salmón, la caballa, el arenque y las sardinas, las fuentes más importantes de AGPI n-335. Asimismo, existe un volumen sustancial de ácido linoleico (LA, n-6 PUFA) en muchos tipos de aceites vegetales como el girasol, la soja, el maíz y las semillas de uva35. El ácido linoleico también se encuentra en algunos productos procesados ​​a partir de estos tipos de aceite, como la margarina35. Volúmenes considerables de ácido alfa-linolénico (ALA, n-3 PUFA) se encuentran en muchas fuentes vegetales. Algunas fuentes de aceite vegetal conocidas y comunes incluyen soja y colza, vegetales, algunas nueces y, sobre todo, linaza y tipos de aceite de linaza35. La Organización Mundial de la Salud se ha centrado en la proporción de LA a ALA en la dieta36; En consecuencia, el nivel mínimo de ingesta de AGE debe ser (2,5 %) LA y (0,5 %) ALA para prevenir los síntomas de deficiencia y proporcionar la energía necesaria para los adultos37.

Solo existe un artículo en farsi, donde se evalúan algunos factores ecológicos que afectan la etapa de crecimiento vegetativo de G. tournefortii L., y los compuestos de ácidos grasos extraídos39. Matthaus y Ozcan (2011) existen siete compuestos de ácidos grasos en el aceite extraído de G. tournefortii L. donde los ácidos grasos linoleico y oleico rinden (57,8%) y (28,5%) como fuentes potenciales de nutrientes, respectivamente 33. Los hallazgos de este estudio se corresponde con el de 33. Abdul et al. (2012) realizaron un estudio sobre el contenido de ácidos grasos en el aceite de Gundelia L. donde encontraron ocho ácidos grasos en semillas de G. tournefortii L. con alto contenido de ácido oleico y ácido linoleico en (40.13%) y (20.33%), respectivamente40. Debido a que el ácido oleico se identifica como el primer compuesto en su estudio, no se corresponde con los resultados de este estudio. Se informan diferentes volúmenes cuantitativos sobre otros compuestos identificados en el estudio, que no se corresponden con este estudio. Khanzadeh et al. (2014) realizaron un estudio sobre las propiedades fisicoquímicas del aceite de semilla de G. tournefortii L. e identificaron 11 ácidos grasos. Tres de estos tipos de ácidos grasos son el ácido linoleico, el ácido oleico y el ácido palmítico con volúmenes de (54,59 %), (29,59 %) y (9,88 %) compuestos predominantes, respectivamente41. Los compuestos identificados en su estudio son consistentes con los de diferentes volúmenes. Zarei et al. (2013) evaluaron algunas de las características ecológicas y el contenido de semillas de G. tournefortii L., donde G. tournefortii L. tenía una condición potencial de crecimiento adecuada con algunos de los factores ecológicos como precipitación media anual (241,8 mm), temperatura media anual (18 °C), pH del suelo (8.18) y CE del suelo (1.3 ds/m) en la zona mencionada. Confirmaron que las semillas de G. tournefortii L. contienen 10 ácidos grasos. Entre estos 10 destacan tres compuestos de ácido linoleico (45,46%), ácido oleico (38,5%) y ácido palmítico (10,42%)39. Sus resultados tanto en las secciones de características ecológicas como de ácidos grasos son consistentes con los resultados de este estudio. Al Saadi et al. (2017) evaluaron la variación en el contenido y la composición de ésteres metílicos de ácidos grasos y encontraron tres compuestos de ácidos grasos en semillas oleaginosas de G. tournefortii L., donde los volúmenes más altos se registran como ácido linoleico (43,98 %), ácido oleico (28,29 %) y ácido palmítico (13,42%), respectivamente42. Los resultados obtenidos se corresponden con los resultados de este estudio.

A partir de una visión general, el análisis de conglomerados se ejecuta en la ecología vegetal cuantitativa y en una amplia gama de otros campos científicos. Este análisis se ejecuta para encontrar un patrón y orden en un conjunto de datos donde se encuentra una serie de grupos con el volumen de varianza dentro de los grupos en su mínimo y entre grupos en su máximo43. Los resultados del análisis de conglomerados en diferentes secciones de resultados revelaron que los sitios de estudio en base a la existencia de similitudes entre ellos pueden clasificarse en diferentes conglomerados y separarse entre sí.

En cuanto al aislamiento e identificación de metabolitos secundarios de plantas medicinales, debido a la presencia de compuestos bioactivos benéficos controlados por procesos genéticos e influenciados por factores ambientales, este tema siempre ha sido y es una preocupación para los investigadores involucrados. Se sugiere que el papel de las propiedades físicas y las características morfológicas de las semillas de G. tournefortii L., junto con los estudios complementarios pertinentes sobre su diversidad genética, se evalúen de manera combinada. Además, considerar los dos factores agronómicos de G. tournefortii L., a saber, la mejora de la raza y la mejora de los cultivos a escala de tierras de cultivo, junto con la evaluación de las características ecológicas de sus cultivares silvestres, arrojará resultados más realistas.

Las muestras de referencia de ácidos grasos son el ácido mirístico (C14:0; ácido tetradecanoico), ácido palmítico (C16:0; ácido hexadecanoico), ácido esteárico (C18:0; ácido octadecanoico), ácido oleico (C18:1; ácido 9-octadecanoico ácido), ácido linoleico (C18:2; ácido 9,12–octadecadienoico) y ácido linolénico (C18:3; ácido 9,12,15–octadecatrienoico), adquiridos de Sigma-Aldrich (St. Louis MO). Se compró éter de petróleo (40–60C) de la empresa química Merck, Alemania (pureza > 98%) para la extracción de aceite de semilla. El metilato de sodio (CH3ONa) se adquiere de Merck Company (Schuchardt Alemania). El metanol extrapuro (CH3OH, pureza ≥ 99,9 %) y el grado analítico de n-hexano (C6H14) se compran a la empresa química Merck (Darmstadt, Alemania). El sulfato de sodio (Na2So4) se adquiere de Aldrich (Munich, Alemania). Se compra grasa de silicona (Loxeal Cesano M. Italia) para el experimento.

La región central de Zagros en Irán cubre alrededor de tres millones cien mil hectáreas, considerada un importante polo económico y de investigación en términos de cultivo, producción y procesamiento de plantas medicinales. La existencia de factores como una rica biodiversidad, condiciones climáticas específicas, diversas áreas montañosas, muchas cuencas hidrográficas y ríos, y campos cubiertos por bosques y pastizales son las características destacadas de esta región. En general, se seleccionan 11 hábitats principales de la planta G. tournefortii L. como diferentes sitios estudiados (Fig. 7). Se evalúan y determinan algunas de las características ecológicas influyentes en el crecimiento reproductivo de la mencionada planta. (Cuadro 9).

Ubicación geográfica de las áreas de estudio en la región central de Zagros en Irán (los puntos marcados en el mapa indican los sitios de estudio).

G. tournefortii L. es una planta nativa espinosa perenne que crece extensamente en la región central de Zagros en Irán entre marzo y abril. G. tournefortii L. tiene raíces grandes y verticales y tallos semi herbáceos y ramificados, que se dividen en una flor. Sus hojas abrazan y rodean el tallo, sin pecíolos, terminando con profundos cortes y bordes dentados. Las semillas de la planta son livianas y alargadas con sombrillas peludas, con una muy alta capacidad de viabilidad14. En general, los ecosistemas de pastizales son partes de cuencas hidrográficas gestionadas por el Ministerio de Agricultura Jahad de Irán. Para ejecutar este estudio, se realizan las coordinaciones necesarias con las autoridades para recolectar la planta mencionada, sujeto al permiso de la Organización de Manejo de Recursos Naturales y Cuencas Hidrográficas de Irán, subsidiaria del Ministerio de Agricultura Jahad de Irán a través de la carta Número 121/99/6778. con fecha del 31 de mayo de 2020. La identidad taxonómica de la planta mencionada se confirma comparando el espécimen del comprobante recolectado con el de la identidad conocida disponible en el herbario del Departamento de Recursos Naturales de la Universidad Tecnológica de Isfahan, Irán. Los especímenes recolectados de la planta G. tournefortii L. se comparan con sus especímenes de Vale número HIUT6171 en el herbario del Departamento de Recursos Naturales por la Sra. Mahnaz Bayat, experta botánica oficial en herbario del Departamento de Recursos Naturales de la Universidad de Isfahan de Tecnología, Irán (su dirección de correo electrónico es [email protected]).

Primero, se evalúa y analiza el estudio fenológico de la etapa reproductiva de las semillas de G. tournefortii L. durante los dos períodos diferentes, el inicio de la producción de semillas y el final de la producción de semillas (Fig. 8). El proceso de muestreo se ejecuta con base en un diseño completamente al azar mediante la aplicación del método de transecto cuadrante en todos los sitios de estudio al inicio y al final de las etapas de producción de semillas (Cuadro 10). A continuación, se determina el tamaño de la muestra en cada sitio de estudio según 1515, donde, los botones florales de G. tournefortii L. se cortan en unidades de muestreo y se colocan en bolsas de muestreo específicas y luego, las muestras se trasladan al laboratorio botánico de la Departamento de Recursos Naturales de la Universidad Tecnológica de Isfahan, Irán. Las semillas recolectadas se secan en una situación estándar sin luz, infección y humedad dentro de los 21 días y las muestras incompletas e inmaduras se separan inicialmente. Las semillas secas se muelen en pedazos más pequeños a través de un molino eléctrico (Modelo PX-MFC90D). Las muestras se separan y envasan a partir de dos etapas fenológicas de producción de semillas.

Parte (a): Gundelia tournefortii L.; Parte (b): La inflorescencia del capitolio de G. tournefortii L.; Parte (c): muestras de semillas de G. tournefortii L. al comienzo de la etapa de producción de semillas; Parte (d): muestras de semillas de G. tournefortii L. al final de la etapa de producción de semillas.

Se consumen 100 g de las muestras molidas de semillas de G. tournefortii L. para la extracción de aceite de semillas. El solvente de éter de petróleo (40–60 °C) se consume para la extracción del aceite de semilla a través del aparato Soxhlet durante 5 horas16. Después de que la mezcla de aceite y solvente se filtre a través de papel de filtro Whatman No. 1. Después de eso, el solvente se elimina mediante un evaporador rotatorio al vacío (Modelo IKA HB 10) y el aceite de rendimiento se mantiene en el refrigerador a 4 °C para un examen más detallado. Este experimento se realiza por separado para cada etapa fonológica.

Para determinar los perfiles de ácidos grasos del aceite de semilla de G. tournefortii L., primero, las muestras se metilan inicialmente de acuerdo con el método AOAC17. A continuación, las muestras metiladas (1 μL) se inyectan en el cromatógrafo de gases (BEIFEN 3420A) equipado con un detector de ionización de llama. (FID), y luego, los ésteres metílicos de ácidos grasos de cada muestra se separan a través de WCOT de sílice fundida HP-88 (100 m × 0.25 mm × 0.20 μm). El nitrógeno se consume como gas portador con un caudal de 0,5 ml/min. El programa de temperatura de esta columna se ajusta como: primero, la columna se mantiene a 175 °C durante un minuto y, a continuación, la temperatura se aumenta a 240 °C durante 2,5 minutos. El tiempo total registrado es de 29 min. La temperatura de inyección es de 250 °C con una relación de división de 1:30.

El análisis se realiza para todos los hábitats principales, incluido el extracto de rendimiento de volumen cuantitativo y cualitativo y los perfiles de ácidos grasos para cada muestra durante las dos etapas fenológicas. En este contexto, los resultados se informan como Media ± SD con análisis repetido (n = 3) por el software estadístico SPSS versión 21. El software estadístico R versión 4.0.4. se aplica para ejecutar el PCA y el análisis de conglomerados. Todos los ("Reshape2"), ("ade4"), ("ggplot2"), ("factoextra"), ("lattice"), ("permute"), ("vegan"), ("cluster") y Se nombran los paquetes ("tidyverse") aplicados en el software R Studio (lenguaje de programación para cálculos e imágenes visuales obtenidas mediante procesamiento informático).

Debido a preocupaciones éticas y de privacidad, los datos y el material del estudio actual están disponibles del autor correspondiente a pedido razonable.

Los conjuntos de datos generados y analizados durante el estudio actual están disponibles del autor correspondiente a pedido razonable.

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Los autores agradecen al Departamento de Recursos Naturales de la Universidad Tecnológica de Isfahan (IUT), Irán, por proporcionar equipos e instalaciones para la investigación.

Los autores no recibieron apoyo de ninguna organización para el trabajo presentado.

Departamento de Recursos Naturales, Universidad Tecnológica de Isfahan, Isfahan, 84156–83111, Irán

HR Karimzadeh, HR Farhang y M. Tarkesh Esfahani

Departamento de Horticultura, Facultad de Agricultura, Universidad Tecnológica de Isfahan, Isfahan, 84156–83111, Irán

M. Rahimmalek

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HR Karimzadeh1, *, HR Farhang1, M. Rahimmalek2, M. Tarkesh Esfahani1 1. HR Karimzadeh (Supervisor, coordinador de todos los pasos de la investigación y autor correspondiente de la investigación). Oficina: Departamento de Recursos Naturales de la Universidad Tecnológica de Isfahan, Isfahan 84,156 83,111, Irán. Correo electrónico: [email protected]; Teléfono: + 9831- 33 913 558; Fax: + 9831–33 912 840; Sitio web: Hamid Reza Karimzadeh; Campos de Investigación: Ciencia del Suelo, Conservación de Suelos y Aguas, Evaluación de Impacto Ambiental, Ordenamiento Territorial y Gestión del Uso de Suelos. 1. HR Farhang (diseñó y realizó todos los experimentos y coescribió el manuscrito). Hamid Reza Farhang es estudiante de doctorado en Ingeniería y Ciencias de Pastizales en el Departamento de Recursos Naturales de la Universidad Tecnológica de Isfahan, Isfahan 84,156 83,111, Irán. Correo electrónico: [email protected]; Teléfono: + 9831–37 774 871; Fax: + 9831–37 773 169; Áreas de Investigación: Plantas Medicinales (características fitoquímicas: metabolitos secundarios y compuestos químicos bioactivos), Biosíntesis y estudios asociados a la Nanotecnología involucrando (Síntesis verde y Biosíntesis de plantas mencionadas); Ecología vegetal (estudio sobre autecología y sinecología/características ecológicas cuantitativas de plantas de especies de pastizales); Fitosociología y Biodiversidad. 2. M. Rahimmalek (asesor de investigación, coordinador de todos los asuntos de experimentos fitoquímicos y coautor del manuscrito). Oficina: Departamento de Horticultura, Facultad de Agricultura, Universidad Tecnológica de Isfahan, Isfahan 84,156 83,111, Irán. Correo electrónico: [email protected]; Teléfono: + 9831–33 913 348; Fax: + 9831–33 912 254; Sitio web: Dr. Mehdi Rahimmalek; Áreas de Investigación: Plantas medicinales, Extracción y análisis de metabolitos secundarios y Biotecnología Mejora de plantas medicinales. 1. M. Tarkesh Esfahani (asesor de investigación, diseñó y analizó los datos con software estadístico y coescribió el manuscrito). Oficina: Departamento de Recursos Naturales de la Universidad Tecnológica de Isfahan, Isfahan 84,156 83,111, Irán. Correo electrónico: [email protected]; Teléfono: + 9831–33 911 025; Fax: + 9831–33 912 840; Sitio web: Mostafa Tarkesh Esfahani; Campos de Investigación: Modelado Espacial; Modelado de distribución de especies e inventario de pastizales. Es necesario señalar que todos los autores leyeron y aprobaron el manuscrito final.

Correspondencia a HR Karimzadeh.

Los autores declaran no tener conflictos de intereses.

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Reimpresiones y permisos

Karimzadeh, HR, Farhang, HR, Rahimmalek, M. et al. Variaciones espacio-temporales del extracto producido y compuestos de ácidos grasos identificados de semillas de Gundelia tournefortii L. en el centro de Zagros, Irán. Informe científico 13, 7665 (2023). https://doi.org/10.1038/s41598-023-34538-5

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Recibido: 19 noviembre 2022

Aceptado: 03 mayo 2023

Publicado: 11 mayo 2023

DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-023-34538-5

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